1、实验结果的统计处理需根据具体实验要求来确定。你可以选择使用吸光度（OD）值、细胞存活率或细胞抑制率等作为统计指标。 在查阅相关文献时，你会注意到这些指标在文献中均有应用。你可以参考这些文献来选择最适合你实验的数据表达方式。 绘制实验曲线并不复杂，可以使用EXCEL或SPSS等软件工具来完成。
2、要计算细胞抑制率，用1减去所得到的增殖率即可。
3、在配制MTT时，通常使用PBS（磷酸盐缓冲溶液）溶解，也有部分人选择生理盐水。以下是PBS的配方：NaCl 8gKCl 0.2gNa2HPO4 44gKH2PO4 0.24g调整pH值至4最终定容至1L扩展资料MTT法又称MTT比色法，是一种检测细胞存活和生长的方法。
4、第三天、第四天：解冻MTT，检测细胞生长状态，加入MTT溶液，培养4小时后，加入增溶溶液，振荡溶解，测量吸光度，处理分析结果。实验过程中需注意以下几点： 接种时细胞悬液需混匀，避免沉淀。 减少误差，培养板周围孔只加培养基。 加样本前，先吸出培养基，避免细胞死亡。
1、MTT法实验步骤如下：首先，收集对数期细胞，调整浓度至1000-10000个细胞/孔，用100ul细胞悬液铺板于96孔平底板上，边缘孔用无菌PBS填充。细胞在5% CO2和37℃的环境下孵育，直至形成单层细胞。
2、以下是以贴壁细胞为例的实验步骤： 细胞铺板：通常使用96孔板，收集对数期细胞，铺板密度为1000-10000/孔，每孔加液量100μl（边缘孔用无菌PBS填充）。
3、实验操作步骤包括：接种细胞，培养细胞，呈色，比色。接种时使用含10%胎小牛血清的培养液配成单个细胞悬液，接种于96孔板。培养条件同一般条件，培养3-5天。细胞培养后，每孔加MTT溶液，继续孵育4小时，吸弃孔内上清液，加DMSO溶解结晶。比色时在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值。
MTT分析法是一种基于活细胞代谢物还原剂3-（4，5）-dimethylthiazol-2-yl）-2，5-diphenyltetrazolium bromide（MTT）的细胞增殖检测方法。MTT是一种黄色化合物，可作为氢离子受体，在活细胞线粒体中，通过琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下开裂tetrazolium环，生成蓝色的formazan结晶。
细胞增殖检测方法：MTT法 MTT法主要以3-（4，5）-dimethylthiahiazo （-z-y1）-3，5-di- phenytetrazoliumromide， MTT噻唑蓝作为基础，该物质在活细胞线粒体中的呼吸链作用下，tetrazolium环开裂生成蓝色的formazan结晶，其生成量与活细胞数目成正比。
MTT法，又称MTT比色法，是一种广泛应用于检测细胞存活和生长的常用方法。检测原理是，活细胞中的线粒体琥珀酸脱氢酶能够将外源性MTT还原成不溶于水的蓝紫色结晶甲臜，并沉积在细胞中。而死细胞则不具备这一功能。
在选择细胞增殖检测方法时，MTT法（3-（4，5-二甲基噻唑-2-基）-2，5-二苯基四唑溴化物）和CCK8（细胞计数检测试剂盒）都有其特点。MTT法通过活细胞的线粒体还原外源MTT形成结晶，然后测定其溶解后吸收值，反映细胞存活。但其操作复杂，可能影响实验结果准确性，并且存在致癌风险。
在评估细胞增殖时，MTT法和CCK8法各有所长。MTT法通过检测活细胞线粒体中琥珀酸脱氢酶催化MTT还原形成蓝紫色结晶甲臜，反应过程需溶解结晶，操作相对复杂且可能影响实验精度；而CCK8法利用水溶性四唑酮盐，减少溶解步骤，操作简便，但成本较高。